.

.

Szkolenia/kursy

Szkolenie	Ilość godzin	Opis	Cena
AI w codziennej pracy placówki medycznej	5 h	🏥 ✨ AI w codziennej pracy placówki medycznej ✨ Praktyczne szkolenie online/stacjonarne dla pracowników szpitali i placówek ochrony zdrowia 🎯 Bez programowania, bez technicznego języka – na przykładach z codziennej pracy. AI może pomóc w: 💬 komunikatach dla pacjentów 📝 notatkach i dokumentach 📋 pismach, procedurach i instrukcjach 📊 raportach, zestawieniach i listach zadań Dla kogo? Rejestracja, administracja, koordynatorzy, oddziały i poradnie 👩‍⚕️ 5 godzin praktycznej pracy z AI ✅ Forma: kurs online lub stacjonarnie	400 zł
AI w codziennym życiu nastolatka – Ogarnij AI po swojemu!	5 h	🤖✨ AI w codziennym życiu nastolatka – Ogarnij AI po swojemu! ✨ Kurs Prompt Engineeringu online dla młodzieży 13–18 lat 🎯 Uczymy rozmawiać z AI tak, żeby naprawdę pomagała: 🧠 stres i emocje 🌙 sen i rytm dnia 🍎 energia i odżywianie 🏃 aktywność i motywacja ✅ zdrowe nawyki i nauka 🚫 Zero programowania 🚫 Zero żargonu 💡 Same przykłady z życia! 💰 10 godzin (lekcyjnych) – tylko 400 zł! Prowadzi zgrany i innowacyjny zespół ekspertów Meduniv Kielce ❤️	400 zł
*Nowoczesne techniki izolacji kwasów nukleinowych oraz ocena jakościowa i ilościowa materiału genetycznego w diagnostyce laboratoryjnej*	1 dzień (9:00–17:30) – 3 × 45 min teorii + 6 × 45 min praktyki	🎯 Cel szkolenia: Rozwinięcie kompetencji w zakresie świadomego i krytycznego prowadzenia etapu przedanalitycznego i analitycznego badań molekularnych poprzez: 🔬 zrozumienie molekularnych podstaw izolacji DNA i RNA 🧪 właściwy dobór metody izolacji do typu materiału klinicznego i celu badania 📊 ocenę jakości, czystości i integralności izolatu (PCR, RT-PCR, NGS) ❄️ poznanie zasad bezpiecznego przechowywania materiału i kwasów nukleinowych ⚠️ identyfikację krytycznych punktów kontroli (critical control points) ✅ podejmowanie decyzji diagnostycznych na podstawie parametrów jakościowych próbki 👩‍🔬 Dla kogo? Diagności laboratoryjni, technicy laboratoryjni, pracownicy naukowo-dydaktyczni oraz doktoranci realizujący badania z wykorzystaniem technik izolacji kwasów nukleinowych. 📚 Część teoretyczna (3 × 45 min): 1️⃣ Etap przedanalityczny jako fundament diagnostyki molekularnej – od pobrania do ekstrakcji, stabilność DNA vs RNA, transport i przechowywanie materiału 2️⃣ Chemia izolacji – liza komórkowa i inaktywacja nukleaz, metody: klasyczna, kolumienkowa, magnetyczna, izolacja z materiałów trudnych (FFPE, wymazy, mała objętość próbki) 3️⃣ Kontrola jakości izolatu – spektrofotometria vs fluorometria, interpretacja wskaźników czystości, integralność DNA i RNA 4️⃣ Przechowywanie i archiwizacja materiału genetycznego – degradacja w praktyce, cykle zamrażanie–rozmrażanie, bankowanie materiału, stabilność a powtarzalność badań 5️⃣ Krytyczna analiza przypadków diagnostycznych – niska wydajność izolacji, kontaminacja, niezdolność próbek do analizy 🧫 Część praktyczna (6 × 45 min): 1️⃣ Izolacja kwasów nukleinowych – samodzielna izolacja DNA i RNA metodą kolumienkową z materiału klinicznego, izolacja automatyczna, identyfikacja punktów krytycznych 2️⃣ Ocena ilościowa i jakościowa izolatu – pomiar stężenia (spektrofotometria/fluorometria), interpretacja wskaźników czystości (A260/A280, A260/A230), ocena integralności metodą elektroforezy 3️⃣ Zabezpieczenie i przechowywanie materiału genetycznego – zasady przechowywania, dokumentowanie jakości izolatu, ocena przydatności próbki do dalszych badań	1000 zł
*Wstęp do reakcji PCR – zasada działania, projektowanie, interpretacja (szkolenie podstawowe)*	1 dzień (9:00–17:30) – 3 × 45 min teorii + 7 × 45 min praktyki	🎯 Cel szkolenia: Zapoznanie z zasadą działania standardowej reakcji PCR oraz zaplanowanie i przeprowadzenie badania. 👩‍🔬 Dla kogo? Uczniowie szkół średnich o profilu biologiczno-chemicznym, studenci kierunków przyrodniczych i medycznych, osoby zainteresowane pracą naukową z wykorzystaniem technik biologii molekularnej oraz osoby zaczynające pracę w laboratorium genetycznym, mikrobiologicznym, molekularnym i diagnostyki laboratoryjnej. 📚 Część teoretyczna (3 × 45 min): 1️⃣ Wstęp do analizy jakościowej i ilościowej DNA z wykorzystaniem techniki łańcuchowej reakcji amplifikacji 2️⃣ Mechanizm działania reakcji PCR, zasady projektowania starterów, dobór odczynników i warunków reakcji, skład mieszaniny reakcyjnej, metody optymalizacji, niezbędne wyposażenie laboratorium 3️⃣ Mocne i słabe strony reakcji PCR, problemy w reakcji PCR, zastosowanie 4️⃣ Interpretacja wyników reakcji PCR na wybranych przykładach 🧫 Część praktyczna (7 × 45 min): 1️⃣ Zapoznanie z niezbędnym wyposażeniem laboratorium i obsługą urządzeń 2️⃣ Przygotowanie mieszaniny reakcyjnej oraz ustalenie warunków reakcji 3️⃣ Interpretacja wyników reakcji PCR z wykorzystaniem elektroforezy agarozowej lub automatycznej	1000 zł
*Zaawansowane techniki PCR – szkolenie zaawansowane*	2 dni: 10:00–15:00 (dzień 1) + 10:00–16:00 (dzień 2) – 6 × 45 min teorii + 7 × 45 min praktyki	🎯 Cel szkolenia: Zapoznanie z technikami wykorzystującymi reakcję łańcuchowej polimeryzacji oraz ich zastosowaniem w diagnostyce i badaniach naukowych. 👩‍🔬 Dla kogo? Studenci kierunków przyrodniczych i medycznych, osoby zainteresowane pracą naukową z wykorzystaniem technik biologii molekularnej, osoby zaczynające pracę w laboratorium genetycznym, mikrobiologicznym, molekularnym oraz diagności laboratoryjni. 📚 Część teoretyczna (6 × 45 min – dzień 1): 1️⃣ Wstęp do analizy jakościowej i ilościowej DNA z wykorzystaniem technik łańcuchowej reakcji amplifikacji 2️⃣ Modyfikacje reakcji PCR: multiplex PCR, PCR-ASO, nested PCR, HRM-PCR, Real Time PCR, RT-PCR – mechanizmy działania, dobór odczynników i warunków reakcji, skład mieszaniny reakcyjnej, metody optymalizacji, niezbędne wyposażenie laboratorium 3️⃣ Mocne i słabe strony reakcji PCR, problemy w reakcji PCR, zastosowanie 4️⃣ Interpretacja wyników reakcji PCR na wybranych przykładach 🧫 Część praktyczna (7 × 45 min – dzień 2): 1️⃣ Zapoznanie z niezbędnym wyposażeniem laboratorium i obsługą urządzeń 2️⃣ Przygotowanie mieszaniny reakcyjnej oraz ustalenie warunków reakcji multiplex PCR, HRM-PCR, Real Time-PCR, RT-PCR 3️⃣ Interpretacja wyników reakcji PCR z wykorzystaniem elektroforezy agarozowej lub automatycznej	2300 zł
*NGS w praktyce – szkolenie zaawansowane*	2 dni: 10:00–15:00 (dzień 1) + 10:00–16:00 (dzień 2) – 4 × 45 min teorii + 7 × 45 min praktyki	🎯 Cel szkolenia: Poznanie technologii sekwencjonowania NGS w teorii i praktyce. 👩‍🔬 Dla kogo? Studenci kierunków przyrodniczych i medycznych, osoby zainteresowane pracą naukową z wykorzystaniem technik biologii molekularnej, osoby zaczynające pracę w laboratorium genetycznym, mikrobiologicznym, molekularnym oraz diagności laboratoryjni. 📚 Część teoretyczna (4 × 45 min): 1️⃣ Wstęp do technologii NGS: mechanizm działania, zaplanowanie badania, oferta rynkowa w Polsce w zakresie aparatury i odczynników 2️⃣ Dobór odczynników, analiza protokołu na wybranym przykładzie, metody optymalizacji, niezbędne wyposażenie laboratorium 3️⃣ Mocne i słabe strony NGS, zastosowanie 4️⃣ Interpretacja wyników na wybranych przykładach 🧫 Część praktyczna (7 × 45 min): 1️⃣ Zapoznanie z niezbędnym wyposażeniem laboratorium i obsługą urządzeń 2️⃣ Przygotowanie materiału do badania: analiza jakościowa i ilościowa DNA, przygotowanie biblioteki, normalizacja, denaturacja i poolowanie 3️⃣ Instruktaż obsługi sekwenatora i warunków sekwencjonowania	3000 zł (2 dni) / 2000 zł (1 dzień)
*Podstawy analizy danych NGS z elementami Linux*	1 dzień (9:00–16:15) – 4 × 45 min teorii + 4 × 45 min praktyki	🎯 Cel szkolenia: Wyposażenie uczestników w umiejętności poruszania się w środowisku CLI (Command Line Interface) oraz przeprowadzenie kompletnego procesu analizy danych (pipeline) – od surowych odczytów z sekwenatora po identyfikację wariantów genetycznych. 👩‍💻 Dla kogo? Biolodzy, diagności oraz pracownicy laboratoriów genetycznych, którzy potrzebują technicznej samodzielności w pracy z surowymi danymi NGS. 📚 Część teoretyczna (4 × 45 min): 1️⃣ Wstęp do bioinformatycznej analizy danych NGS – metody sekwencjonowania, architektura systemów Linux, rola linii komend w przetwarzaniu wysokoprzepustowym, specyfika formatów plików surowych (FASTQ) 2️⃣ Standardy kontroli jakości i przygotowania danych – parametry jakościowe odczytów (Phred score), identyfikacja zanieczyszczeń, usuwanie adapterów, mechanizmy filtracji danych (trimming i cropping) 3️⃣ Zasady mapowania i identyfikacji wariantów – algorytmy dopasowania odczytów do genomu referencyjnego (BWA, Bowtie2), struktura plików mapowania (SAM/BAM), podstawy statystyczne wykrywania polimorfizmów SNP i InDel 4️⃣ Analiza i interpretacja wyników – budowa pliku VCF, filtrowanie wariantów o niskiej wiarygodności, wykorzystanie baz danych do anotacji funkcjonalnej wykrytych zmian 💻 Część praktyczna (4 × 45 min): Praca w środowisku Linux: konfiguracja terminala, poruszanie się w systemie plików, zarządzanie uprawnieniami, instalacja narzędzi bioinformatycznych (Conda) 1️⃣ Analiza w praktyce – samodzielna kontrola jakości (FastQC), czyszczenie danych (fastp), mapowanie odczytów do genomu wraz z konwersją i sortowaniem plików wynikowych (Samtools) 2️⃣ Weryfikacja i wizualizacja wariantów – detekcja zmian genetycznych (Samtools, GATK) oraz manualna ocena z wykorzystaniem przeglądarki genomowej IGV w celu odróżnienia artefaktów od rzeczywistych wariantów	1100 zł

,Dbasz o zdrowie? Zarabiaj pieniądze, grając w Vavada Kasyno,

Podsumowanie koszyka